茶叶中茶多酚的含量比较。
摘 要 为了测定苦丁茶叶中总黄酮的含量，利用黄酮类化合物与金属离子形成的螯合物在510nm处有最大吸收度，用分光光度法进行测定。效果满意，方法简便可靠。
关键词 分光光度法 苦丁茶叶 黄酮
中图分类号 R284.1
Determination of Total Flavone Content in Ilicis Folium Leaf
Zhang Yizhen
（Guangxi College of TCM Nanning 530001）
Li Jianming
（Guangxi Pharm aceutical school 530023）
Abstract Spectrophotometry was used to determine the total fla vone co ntent in Ilicis Folium leaf according to the fact that the maximum absorbency ca n be obtained when the chelate formed by the combination of flavonoids and metal ion is at 510 nm. The result has shown that the method for determination of the total flavone content in Ilicis Folium leaf is easy to handle and reliable with satisfactory result.
Key words Spectrphotometry Ilicis Folium leaf flavone
苦丁茶主要为冬青科植物枸骨(IlexCornutaLindl)和大叶冬青(IlexlatifilonThunb)的叶〔1〕。分布华东及广西等地。具散风热、清头目、治头痛等功用，常为日常饮茶之用。其所含主要化学成分为鞣质、皂甙、黄酮类〔2〕等成分。本文以芦丁为对照品，用分光光度法测定其含量，效果满意，方法简便可靠。
1 原理
黄酮类化合物与金属离子能形成稳定的呈色螯合物；于510nm处有最大吸收，可用分光光度法进行测定〔3〕。
2 仪器及试剂
采用721A型分光光度计(上海第三分析仪器厂)；芦丁对照品(中国药品生物制品检定所提供)；5%的亚硝酸钠及5%硝酸铝试液；4%氢氧化钠试液；其余实验所用试剂均为分析纯。
3 总黄酮的含量测定
3.1 测定波长的选择
取样品液适量，在0.3ml5%亚硝酸钠存在的碱性条件下，经硝酸铝显色后，以试剂为空白参比，于420～700nm范围内测定螯合物的吸收度；吸收曲线图略。螯合物于510nm处有最大的吸收。故测定时选用此波长。
3.2标准曲线的绘制
分别精密吸取芦丁对照液(0.1mg/ml)0.00,0.50,1.00,2.00,3.00,4.00,5.00ml于10ml容量瓶中，用60%乙醇稀释至5.00ml，分别加入5%亚硝酸钠试液0.3ml，摇匀，静置6min，再加5%硝酸铝试液0.3ml，摇匀，静置6min，再加4%氢氧化钠试液4.00ml，用60%乙醇释释至刻度，摇匀，静置12min，以试剂作空白，于510nm处测吸收度，得回归方程：Y=0.8734X-0.0151，r=0.9999。
3.3 样品总黄酮的含量测定
精密称取苦丁茶粉末(40目)约3g，加40ml95%乙醇，先泡0.5h，回流提取2h，抽滤，再加40ml95%乙醇回流提取1.5h，抽滤，合并滤液，减压回收乙醇至仅剩5～7ml为止，放100ml容量瓶中，用60%乙醇稀释至刻度，得样品液。精密吸取样品液1.00ml，置10ml容量瓶中，余下按3.2项下操作，测得吸收度，结果如表1。
表1 样品总黄酮的含量测定结果
编号样品量(g)吸收度样品总黄酮(%)均值(%)RSD(%)1—12.92730.599
2.40
1—22.98970.6122.412.400.421—33.13050.6352.38
2—13.04640.6532.51
2—23.03500.6452.492.500.402—33.04250.6482.49
3.4 样品加样回收试验
为验证提取方法的可靠性，采用了将同一批的苦丁茶叶粉末(40目)称取8份，每2份作一组，一份加入已知量的芦丁对照品，在与测定方法相同条件下，进行提取和测量，结果如表2。
表2 样品加样回收试验结果
组别样品含量
(mg)加入量
(mg)测得量
(mg)回收率
(%)171.565.8077.41100.06272.054.0076.15100.13374.533.6078.0999.95474.324.7079.0199.99
平均回收率(%)=100.04
RSD=0.06(%)
4 讨论
4.1 为使黄酮提取完全，回流提取后的过滤宜用抽滤，把药渣抽干。但过滤杂质沉淀时，不宜用抽滤。
4.2 经实验证明，乙醇提取液浓缩后加等量水能有效地使杂质沉淀排除干扰。
4.3 样品含量测定结果中，第一批样品的总黄酮含量低于第二批样品，说明苦丁茶叶中总黄酮含量与采收地点、时间等因素有关。
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茶多酚中残留乙酸乙酯的含量测定
茶多酚是从绿茶中提取的多酚类物质，具有很强的清除自由基作用，且具有抗突变、抗癌、抗衰老、抗菌等药理作用，近年来在医疗保健方面引起了广泛的关注。该产品工艺中使用了乙酸乙酯，故应控制残留量。
本文用气相色谱法，选用401有机担体为固定相，乙酸丙酯为内标，对茶多酚及其产品中的残留乙酸乙酯进行了含量测定，该方法操作简便，精密度和回收率均较好，可作为制定质量标准乙酸乙酯控制方法的参考。
一、测定仪器、试药及色谱条件
仪器：日本岛津GC-RIA型气相色谱仪，RPR-GI微处理机。
试药：乙酸乙酯、乙酸丙酯均为分析纯。
色谱条件：401有机担体，玻璃柱：3.2mm×1.6m，FID检测器，进样口及检测器温度：200℃，柱温：160℃，理论塔板数（以乙酸乙酯计算）：863，分离度：4.7。
二、测定的线性范围
对照贮备液的配制精密量取乙酸乙酯适量，置容量瓶中加水制成2μL/mL的溶液。
内标贮备液的配制精密量取乙酸丙酯适量，置容量瓶中加水制成2μL/mL的溶液。
测定方法精密量取对照贮备液5份，各精密加入适量内标溶液，加水制成含对照品浓度为0.1～0.8μL/mL，含内标物浓度为0.4μL/mL的梯度溶液，每份进样1μL，连续进样3次，以浓度与对照品/内标峰面积比值进行回归，得回归方程：Y=2.5070X-0.0293r=0.99997.在0.09005～0.72040mg/mL范围内线性关系良好。
注：配制对照和内标贮备液用体积计算是为了配制方便，在计算时以比重换算，以下同。
三、回收率测定
精密称取已知乙酸乙酯残留量的茶多酚和产品各适量，分别精密加入一定量的对照贮备液，按“样品测定”项下操作，测得茶多酚中乙酸乙酯残留量的回收率为99.41％（n=6），RSD=1.91％，片剂中残留量的回收率为99.48％（n=4），RSD=0.18％
四、精密度试验
分别取一批茶多酚及其产品的供试液，进样1μL，连续进样6次，测得茶多酚中残留乙酸乙酯的平均值为5.30％，RSD=0.41％，产品中残留溶剂的平均值为1.25％，RSD=0.43％。
五、样品测定
对照溶液的配制精密量取对照贮备液和内标贮备液各适量，置同一量瓶中，加水制成含对照品和内标物均为0.4μL/mL的溶液。
供试品溶液的配制
茶多酚：精密称取茶多酚约0.1g，置10mL量瓶中，加内标贮备液，加水制成含内标0.4μL/mL的溶液。
茶多酚产品：取5粒，精密称定，研细，精密称取约相当于0.1g的茶多酚，按“茶多酚”溶液制备项下方法配制溶液。
注：取样量应根据乙酸乙酯残留量而定，应使乙酸乙酯与内标物的峰响应基本一致。
测定方法精密量取对照品溶液和供试品溶液各1μL，注入仪器，连续进样3次，按峰面积计算即得。
测定结果在上述条件下乙酸乙酯和乙酸丙酯能很好分离，无干扰测定峰出现（图1），对3个厂家的茶多酚和2批片剂中的溶剂残留量进行了测定，结果见表1。
样品名称
A
B
C
1
2
含量（W/W ％）
5.71
5.62
5.81
2.12
1.25
RSD（％）
0.57
0.55
0.04
2.06
0.01
茶叶中锂的测定
赖家平 谭昌云 陈伟珍 方 蕾 杜贤新 钟 维 招 龙
摘 要 用火焰原子吸收光谱法测定了茶叶中锂元素的含量。并比较了两种消解茶叶方法的测定结果。实验结果表明，干法比湿法效果要好得多，干法消解的回收率在92.2%～96.1%之间。
关键词：茶叶，锂，火焰原子吸收光谱法(FAAS)。
Determination of Lithium in Tea by FAAS
Lai Jiaping,Tan Changyun,Chen Weizhen,Fang Lei,Du Xianxin,Zhong Wei,Zhao Long
(Zhanjiang Normal College,Zhanjiang 524048)
Abstract Lithium in tea was determined by flame atomic absorption spectroscopy (FAAS).The results achieved by two sample digestions are compared.It is shown experimently that the ashy-digestion method is superior to watery-digestion method.The recovery ratio of the ashy-digestion is 92.2%～96.1%.
Keywords:Lithium,Tea,Flame atomic absorption spectroscopy.
茶、咖啡、可可并称为世界三大饮料，其中以茶为首。茶叶中含有多种有机成分以及人体必需的微量元素。随着检测技术的发展，近年来人们先后检测出茶叶中含有锌、锰、铜、钙、镁、锶等人体必需的微量元素。［1］而对于锂元素在茶叶中的含量却鲜有提及，且论文很少。据报道，锂元素也是人体必需的微量元素之一。近年来，许多有关神经紊乱症的病例均依靠含有锂元素的药物治疗，而且卓有成效。［1］锂对人体的内分泌系统也有着广泛的影响，锂可以使血液中的血糖降低，可以用以治疗糖尿病。［2］本文用火焰原子吸收光谱法测定了茶叶中锂元素的含量，并比较了两种消解茶叶方法的结果。并根据测定结果讨论了测定方法的可行性。
1 实验部分
1.1 实验仪器
澳大利亚GBC 932 AA原子吸收分光光度计，锂空心阴极灯。马弗炉，可调电炉。
1.2 实验试剂
锂标液储备液(1 g.L-1)：由碳酸锂(光谱分析纯)用HCl溶解配制而得。
锂标准液：由锂标液储备液用亚沸水稀释而得。
1 mol.L-1硝酸溶液(优级纯)；浓硝酸(优级纯)；3% H2O2溶液(分析纯)；高氯酸(优级纯)。
1.3 实验条件
本实验所采用的实验条件见表1。
表1 仪器工作条件
测量波长灯电流狭缝带宽空气流量乙炔流量nmnAnmL.min-1L.min-1670.86.0
固态速溶茶总灰分测定
FNCPJZCY0016 茶 固态速溶茶总灰分 测定
F_NCP_JZ_CY_0016 茶—固态速溶茶总灰分测定—重量法
a>1 范围
本方法适用于固态速溶茶总灰分的测定。
2 原理
试样用盐酸处理，经525℃±25℃加热灼烧，分解有机物，称量。
3 试剂
浓盐酸：分析纯。
4 仪器设备
实验室常规仪器及下列各项：
4.1 瓷坩埚：容量约 50mL。
4.2 电热板。
4.3 高温电炉：能控制温度于 525℃±25℃。
4.4 干燥器：内盛有效干燥剂。
4.5 分析天平：感量 0.001g。
5 样品测定
5.1 取样
按F_NCP_JZ_CY_0015 或 GB/T 18798.1-2002《固态速溶茶 取样》规定取样，取样后立即进行测定。
5.1.1 取样件数
2～19 件，取样 2 件；
11～25 件，取样 3 件；
26～100 件，取样 5 件；
101～300 件，取样 7 件；
301 件以上，每增加 100 件（不足 100 件者按 100 件计）增取 1 件。
1000 件以上，每增加 500 件（不足 500 件者按 500 件计）增取 1 件。
5.1.2 取样步骤
包装件（箱）的取样，采用顺序取样方法。具体步骤为：设一批包装件（箱）数量为 N，欲取样件（箱）数为n，N/n=r（如果N/n 不是整数，便取r 值的整数部分）；取样时可从任一包装件（箱）开始，每隔（r－1）件取一件，直至全部取出为止。
5.1.2.1 原始样品
5.1.2.1.1 较大包装件（箱）（净含量大于 1kg）的取样步骤：
打开被抽包装件（箱）的外、内包装，迅速用取样勺取得样品（一般不少于200g）并放入样品容器内，然后迅速将样品容器和包装件（箱）的外、内包装密封好，密封前应注意尽量将包装、容器内的空气排除。
5.1.2.1.2 较小包装件（箱）（净含量小于或等于 1kg）的取样步骤：
打开被抽包装件（箱）的外包装，内包装开一小口，直接将样品挤入（倒入）样品容器内，然后迅速将样品容器和包装件（箱）的外、内包装密封好，密封前应注意尽量将包装、容器内的空气排除。
5.1.2.2 平均样品和试验样品
5.1.2.2.1 平均样品由同一批的原始样品合并，经适当混合而成（如样品量过大，可进行适当的缩分）。合并、混合时应注意勿使样品受到机械性损伤或水分增减。
5.1.2.2.2 试验样品由平均样品按照试验要求的数量分成多个，试验样品一般不少于 500g。同样在分装时注意勿使样品受到机械性损伤或水分增减并注意将容器内的空气排除。
5.2 试样准备
将装有固态速溶茶试样的容器摇晃、颠倒，使试样完全混匀。
5.3 坩埚准备
将洁净的坩埚置于525℃±25℃的高温炉内，灼烧 1h，待炉温降至 300℃左右时，取出坩埚，于干燥器内冷却至室温，称量（准确至0.001g）。
5.4 测定步骤
称取试样2g（准确至 0.001g）于已知质量的坩埚内，轻敲坩埚，使试样铺平。用刻度吸管取浓盐酸1.0ml 逐滴加入试样内，使之完全湿润，将坩埚置于冷的电热板上，徐徐加热，使试样充分炭化至无烟，继续加热5min。将坩埚移入 525℃±25℃的高温电炉内灼烧 16h。待炉温降至300℃左右时，取出坩埚冷却，加几滴水湿润灰分，在电热板上蒸干。再移入高温电炉内，于525℃±25℃灼烧 30min，取出置于干燥器内冷却至室温，称量（准确至 0.001g）。
6 结果计算
固态速溶茶总灰分以干态质量分数 w 计，数值以％表示，按下式计算：
w=100×(M1-M2)/(M0×m)
式中：M1——试样和坩埚灼烧后的质量，g；
M2——坩埚的质量，g；
Mo——试样质量，g；
m——试样干物质含量百分率，%。
两次测定的值在符合重复性（7 精密度）的要求下，取其平均值作为分析结果(保留小数点后一位)。
7 精密度
同一样品的两次测定值之差，每100g 不得超过 0.4g。
8 参考文献
GB/T 18798.1-2002《固态速溶茶 取样》
ISO 7514：1990《固态速溶茶总灰分测定》
催化光度法测定茶叶中的痕量锰
1 引言
催化光度法测定痕量锰已有不少报道，溴酚蓝是一种酸碱指示剂，变色范围为3.0～4.6，酸式呈黄色，碱式呈蓝紫色。以邻啡罗啉作活化剂，高碘酸钾氧化溴酚蓝为指示反应测定痕量锰已有报道，其空白反应速度随温度升高迅速加快，影响了测定的灵敏度。我们在实验中发现，使用氨三乙酸作活化剂，空白反应速度受温度影响很小，测定锰的灵敏度和选择性都有较大改善，从而拟定了催化光度测定痕量锰的新方法，并已用于茶叶中锰的测定。
2 实验部分
2.1 仪器和试剂 754型紫外可见分光光度计（上海第三分析仪器厂）。LB801型超级恒温器（辽阳恒温仪器厂）。锰(II)标准溶液：1.0 g/L；溴酚蓝溶液：1.0×10－3 mol/L；KIO4溶液：1.0×10-2 mol/L；氨三乙酸（NTA）溶液：5.0×10-3 mol/L；NaAc-HAc缓冲溶液：pH=3.8；氢氧化钠溶液:1.0 mol/L。所用试剂均为分析纯，水为二次蒸馏水。
2.2 实验方法 在两个25 mL比色管中，分别加入pH=3.8的缓冲溶液4.0 mL，NTA溶液5.0 mL，溴酚蓝溶液0.5 mL，在其中一个比色管中加入一定量锰(II)标准溶液（催化反应，吸光度为A），在另一个比色管中不加锰(II)标准溶液（非催化反应，吸光度为A0），用适量水稀释，在60℃恒温器中恒温15 min后，加入KIO4溶液4.0 mL，用水稀释至刻度，摇匀，在60℃恒温反应10 min，加入1 mol/L氢氧化钠溶液1.0 mL终止反应并使剩余溴酚蓝变色。并置于冷水中冷却至室温，用水做参比，用1 cm比色皿于590 nm处分别测量A和A0值，并求出吸光度差值ΔA=A0-A。
3 结果与讨论
3.1 实验条件的选择 (1)吸收光谱 按实验方法制备试液（加入锰量为4 μg/L）与空白溶液，分别绘制其吸收曲线，最大吸收波长均位于590 nm，故选择测定波长为590 nm。(2)试剂用量的影响 根据试验，选取最佳试剂用量为：pH缓冲溶液4.0 mL，NTA溶液5.0 mL，溴酚蓝溶液0.5 mL，KIO4溶液4.0 mL。（3）酸度的影响 用NaAc-HAc缓冲溶液控制酸度。pH=3.8时，ΔA值最大，本法选pH=3.8。（4）反应温度的影响 温度低，催化反应进行缓慢，随反应温度的升高，反应加快。温度高于60℃，反应有减慢趋势，本法选择反应温度为60℃。(5)反应时间的影响 反应时间在10 min内，ΔA与反应时间t呈线性关系，本法选反应时间10 min。
3.2 固定时间法工作曲线 在上述选定的最佳条件下，在0.4～10 μg/L锰(II)含量范围内，ΔA值与锰含量呈线性关系，工作曲线的回归方程为ΔA=0.0629+0.00255CMn（25 mL中的ng数），相关系数为r=0.9996。
3.3 精密度与检出限 本法9次测定锰(II) 4 μg/L的相对标准偏差为4.0 %。由空白值标准偏差Sbl＝1.8×10－3（n＝11）及工作曲线斜率，计算本法的检出限CL=3Sbl/K=8.5×10-11 g/mL。以邻啡罗啉作活化剂，测定灵敏度为 6.0×10-10 g/mL。
3.4 共存离子的影响 对于4 μg/L 的锰(II)，误差不大于±5%时，下列离子不干扰测定：5×104倍量的K+, Na+, Cl-，NO-3，SO2-4，Ca2+, Ba2+, NH+4；5×103倍量的Zn2+, Al3+, Mg2+, F-；1.5×103倍量的Cd2+,Cu2+; 103倍量的Pb2+, Ni2+, 柠檬酸；5×102倍量的Ag+,Cr3+, Hg2+；102倍量的Cr6+，I-，Fe3+（加入1.0 mL 8.0×10－2 mol/L NaF）；50倍量的Mo(II), Co2+；20倍量的Fe3+。
以邻啡罗啉作活化剂时，下列离子不干扰测定：5×104倍量的K+, Na+, Cl-，NO-3、SO2-4、Ca2+、Ba2+、Mg2+；5×103倍量的PO3-4, Al3+, F-；2.5×103倍量的V(V)；5×102倍量的Pb2+；2.0×102倍量的Zn2+, Cu2+, Ni2+, Cd2+, Ag+, Cr3+, CrO2-4; 102倍量的Hg2+；50倍量的I-, Co2+；15倍量的Fe3+( 加入1.0 mL 2.5 %焦磷酸钠溶液）；10倍量的Mo(VI)；2.5倍量的Fe3+。
由此可见，本法的选择性有较大改善。
3.5 样品分析 茶叶中锰的测定 准确称取1.0 g茶叶样品于100 mL 烧杯中，加入10mL HNO3并于电炉上低温加热，待溶液变清后加25 mL HClO4,继续加热至冒白烟，蒸至近干。冷却后残渣用少量水溶解，转移至100 mL容量瓶中加水约50 mL,用NaOH调至中性，加水稀释至刻度。取适量试液，加入1.0 mL 8.0×10-2 mol/L NaF溶液，按实验方法测定，结果为（μg/g）：517、523、530、527、525、520，RSD为1.1%。对所分析的茶叶样品进行锰的回收实验（n=4），回收率均在93%～107%之间。
如何客观认识茶叶中的铅含量
铅是自然界客观存在的一种物质，任何来自自然界的食品都含有一定的铅，茶叶也不例外。对于茶叶中所含的铅，我们应如何科学的看待呢？
造成目前我国茶叶中铅超标的主要原因有两个。客观原因上，近年，随着经济的快速发展，环境污染问题还相当突出，加剧了茶叶中铅含量的升高。目前，对茶叶铅污染途径的研究还不深入，但从已有的研究结果来看，可能来自以下三方面：一是环境污染，如汽车尾气、工厂降尘等；二是茶园土壤富铅，如铅矿地区茶园；三是制茶机具，如炒茶锅含铅量过高。
在标准原因上，现行国家茶叶卫生标准中铅的限量指标太严，标准规定铅的限量值≤2mg/kg(紧压茶为3)。而世界上一些茶叶主要生产国和进口国对茶叶中铅的限量指标比我国要宽得多，我国是世界上此项指标规定最严的国家。
我国茶叶中铅限量标准制定于1988年，当时是由卫生部门组织起草，标准值是按干茶确定的，对茶叶的饮用特性考虑得不够充分。茶叶毕竟是泡着喝，铅含量还有浸出率问题。
茶叶不同于一般食品，人们通常不是将茶叶全食，而是饮用茶汤。通过饮茶，茶叶中的铅究竟有多少能被摄入人体内？农业部茶叶质检中心曾做过一项试验。将铅含量分别为每千克17.9毫克、13.9毫克、4.3毫克、3.6毫克和3.2毫克五种铅含量超标的茶叶，模仿沏茶，用100℃沸水沏1小时，测定茶汤中铅含量，结果5只茶汤中均未测出铅。可见，尽管茶叶中含有铅，但这些铅不溶解于茶汤或浸出率极微，从而可认为通过饮茶摄入人体的铅是很微量的。
针对当前部分茶叶产品确实还存在铅污染问题，应注意做好应对措施，包括开展“茶叶铅的污染途径研究”。目前，确实有部分茶叶不同程度地遭到铅的污染，对此，政府有关部门、茶业行业和有关科研机构应引起足够注意，组织力量进行研究，探明茶叶铅的污染途径，以期从根本上解决铅污染问题。修订茶叶卫生国家标准。参照国外茶叶铅的限量标准，适当放宽我国作为饮料用的茶叶铅的限量值。
本标准适用于茶叶中水分的测定
本标准适用于茶叶中水分的测定。本标准等效采用国际标准ISO 1573—1980《茶 —103℃时质量损失的测定》。在常压下，茶叶经100℃左右的温度加热至恒重时的质量损失，习惯上称为水分。1 原理试样于103±2℃的恒温干燥箱中加热至恒重，称量。2 仪器和用具实验室常规仪器及下列各项：2.1 铝质烘皿：具盖，内径75～80mm。2.2 鼓风电热恒温干燥箱：温按103±2℃。2.3 干燥器：内盛有效干燥剂。2.4 分析天平：感量0.001g。3 操作方法3.1 取样按GB 8302—87《茶 取样》的规定取样。3.2 试样制备按GB 8303—87《茶 磨碎试样的制备及其干物质含量的测定》的规定，制备试样。3.3 铝质烘皿的准备将洁净的烘皿连同皿盖置于103±2℃的干燥箱中，加热1h，加盖取出，于干燥器内冷却到室温，称量(精确至0.001g)。3.4 测定步骤称取充分混匀的试样5g(准确至0.001g)于已知重的烘皿中，置于103±2℃干燥箱内(皿盖斜置皿边)，加热4h*。加盖取出，于干燥器内冷却至室温，称量。再置于干燥箱中加热1h，加盖取出，于干燥器内冷却，称量。重复加热1h的操作，至直连续两次称量差不超过0.005g，即为恒量，以最小称量为准。4 结果计算4.1 计算方法和公式茶叶水分以质量百分率表示，按下式计算：M1-M2水分(%)=━━━━━━━━×100M0式中：M1——试样和铝质烘皿烘前的质量，g；M2——试样和铝质烘皿烘后的质量，g；M0——试样的质量；g。如果符合重复性(4.2)的要求，取两次测定的算术平均值作为结果。4.2 重复性同一样品的两次测定值之差，每100g试样不得超过0.2g。5 结果报告试验报告应包括下列内容：a. 使用的方法；b. 测定的结果(取小数点后一位)；c.本标准中末规定的或另加的操作；d.试样的名称和产地；e.试验日期，操作人员。*国际标准ISO 1573—80中加热时间为6h，本标准改为4h。
茶叶水分测定方法
中华人民共和国出入境检验检疫行业标准
SN／T 0919—2000
进出口茶叶水分测定方法
Method for the determination Of moisture 0f tea for import and export
2000—06—22发布
2000—11—01实施
中华人民共和国国家出入境检验检疫局发布
前 言
本标准是对原专业标准ZB X501004—1986((出口茶叶水分测定方法)的修订。
本标准与前版无技术路线的改变，仅在标准格式上按照GB／T 1.1—1.993《标准化工作导则 第1单元：标准的起草与表述规则 第1部分：标准编写的基本规定》的要求进行修订。
本标准从实施之日起，同时代替ZB X50 004—1986。
本标准由中华人民共和国国家出入境检验检疫局提出并归口。
本标准由中华人民共和国上海出入境检验检疫局负责起草。
本标准主要起草人：汪玲平、毕立新。
中华人民共和国出入境检验检疫行业标准
进出口茶叶水分测定方法 SN／T 0919—2000
Method for the determination Of moisture 0f tea for import and export
代替ZB X50 004—1986
1、范围
本标准规定了进出口茶叶水分的测定方法。
本标准适用于进出口茶叶水分测定。
2、引用标准
下列标准所包含的条文，通过在本标准中引用而构成为本标准的条文。本标准出版时，所示版本均为有效。所有标准都会被修订，使用本标准的各方应探讨使用下列标准最新版本的可能性。
SN／T 0918—2000进出口茶叶抽样方法
3、定义
本标准采用下列定义。
3.1 茶叶水分tea moisture
在规定温度的空气中加热时的质量损失。习惯上称为水分。
4、抽样
按SN／T 0918抽取试样。
5、检验方法
5.1 原理
在规定的温度下，置茶叶试样于烘箱中加热除去水分达到恒重。
5.2 仪器
5.2.1 电热鼓风烘箱：可自动控制温度。
5.2.2 铝质烘皿：具盖。
5.2.3 干燥器：内装有效干燥剂。
5.2.4 分析天平：感量0.001 g。
5.3 分析步骤
5.3.1 103℃烘箱恒重法(仲裁法)
用已称重的干燥烘皿称取试样(如系压制茶，可用手工或工具分取试样，混匀后称取)约10 g，精确至O.01 g，然后连同打开的皿盖放入(103±2)℃烘箱内烘4 h取出烘皿，加盖置于干燥器内，冷至室温，称重。再放入烘箱内，保持(103±12)℃烘1 h，取出，在干燥器内冷却，称重。重复此过程，直到两次连续称重之差不超过0.005 g，取最小称重。
5.3.2 120℃ 1 h烘箱法(快速法)
用已称重的干燥烘皿称取试样(如系压制茶，见5.3.1)约10 g，精确至0.01 g，然后连同打开的皿盖放入预先加热稍高于120℃的烘箱内，在2 min内调整温度至120℃时起，保持(120±2)℃烘1 h，取出，加盖，置于干燥器内，冷至室温，称重。
5.3.3 130℃ 27 min烘箱法(快速法)
用已称重的干燥烘皿称取试样(如系压制茶，见5。3.1)约10 g，精确至O.01 g，然后连同打开的皿盖放入预先加热稍高于130℃的烘箱内，在2 min内调整温度至130℃时起，保持(130±2)℃烘27 min，取出，加盖置于干燥器内，冷至室温，称重。
5.4 结果计算
茶叶水分含量百分率取到小数点后一位。
5.5 允许误差
测定应作双试验。由同一分析者、同时或相继进行的两次测定的结果之差，不得超过0.2％试样。
茶叶中的含量物质复合物介绍
人体活动所需要的能量主要由糖类、蛋白质和脂肪提供，因此这三者被认为是人体的三大主要营养物质。经科学研究，糖类在茶叶中的含量为IO%-13%之间。茶叶所含的糖类中，有单糖，如葡萄糖、果糖等，也有双糖，如蔗糖、麦芽糖等，还有多糖，如淀粉、纤维素等。因为这些糖类中的大多数都不能溶解于茶汤中，能溶于茶汤的只有40%-5%。因此，人们根据茶叶的这个特点，将其列为低热量饮料，即使是糖尿病和忌糖患者也可以饮用。虽然茶叶中的蛋白质含量很高——在20%以上，然而由于茶叶中的蛋白质基本不会被茶汤溶解，因此茶叶中的蛋白质不可能被人体所吸收。经测定，茶汤中所溶解的蛋白质，其数量只有茶叶中蛋白质总量的1%-2%。而至于茶叶中脂肪的含量本身就很少，因而对人体的影响也就很小。可以说茶叶中所含有的这三大物质，因为不易溶解于茶汤中，所以对人体的影响很小。
茶叶中还含有一类特殊物质——脂多糖。茶叶中所含的脂多糖其实就是脂类和多糖结合在一起而形成的大分子复合物，主要由36%-58%的脂类，260%-47%的糖类，3%-6%的蛋白质，0.5%-l%的氮素，0.7%-1.2%的磷素组成。脂多糖在茶叶中的含量一般在3%左右。脂多糖对于机体的特异性免疫能力可以起到增强作用，并且不会产生副作用。因此，脂多糖可以起到明显的抗辐射作用。此外，脂多糖还可以改善造血功能，起到保护血相的作用。
糖按照结构单元数目多少可以分成单糖、寡糖、多糖、结合糖、糖的衍生物等种类。单糖（monosaccharide）是不能被水解成更小分子的糖。寡糖( disaccharide)是由2-6个单糖分子脱水缩台而成的，其中双糖是最为普遍的，意义也最大。多糖( polysaccharide)分为两种，即淀粉、糖原、纤维素、半纤维素、几丁质（壳多糖( polysaccharide)分为两种，即淀粉、糖原、纤维素、半纤维素、几丁质（壳多糖）为代表的均一性多糖，和糖胺多糖类（透明质酸、硫酸软骨素、硫酸皮肤素等）为代表的不均一性多糖。结合糖，也叫做复合糖、糖缀合物（glycoconjugate l，如糖脂、糖蛋白（蛋白聚糖）等。糖的衍生物主要有糖醇、糖酸、糖胺、糖苷。
茶叶中的含量氨基酸类物质介绍
氨基酸类物质
经化学分析，氨基酸在茶叶中的含量一般在2%-5%之间，含量虽然不算高，但种类不少，仅游离氨基酸就多达25种。氨基酸中，茶氨酸的含量是最高的，并且这种氨基酸为茶叶所特有的。其他种类的氨基酸，如赖氨酸、谷氨酸、苯丙氨酸、苏氨酸、蛋氨酸、异亮氨酸、亮氨酸、色氨酸、缬氨酸也是人体所必需的。另外，茶叶中还含有半胱氨酸、天门冬氨酸、胱氨酸、甘氨酸、组氨酸、精氨酸、丝氨酸等。这些氨基酸对于人体生理功能的正常进行都有重要的作用。比如说苏氨酸、组氨酸和赖氨酸，有助于人体对钙、铁的吸收，能够预防骨质疏松、佝偻病和贫血。胱氨酸和半胱氨酸的作用在于解毒和抗辐射，特别是胱氨酸对于促进毛发生长和防止早衰具有重要作用。斗胱氨酸有助于人体对铁的吸收。而茶氨酸可以帮助扩张血管、松弛支气管和平滑肌，起到强心利尿的作用。亮氨酸和组氨酸有助于人体细胞的再生，能起到加速伤口愈合的功能。古氨酸和精氨酸可以降低血氨，医治肝昏迷。蛋氨酸能调节脂肪代谢，对于动脉粥样硬化有预防作用。色氨酸有助丁人体大脑的神经传递功能的改善。总而占之，茶叶中所含有的多种氨基酸，都是人体代谢机能所不能缺少的，其中的有些在人体中无法合成，只有通过饮食摄取，而茶就是最便捷的途径。
茶叶里面氨基酸的含量取决于茶的种类。对于氨基酸的总量而言，绿茶的含量要比红茶和白茶多，乌龙茶和黄茶含量中等，黑茶中的含量相对较低。对于同一种茶来说，高级茶的含量自然高于低级茶。但如果具体到某一种氨基酸，情况就不尽如此了。比如说茶氨酸在白茶巾含量最多，而绿茶和红茶则次之；精氨酸在绿茶中含量是最多的，红茶次之；谷氨酸的含量绿茶也是最多的，其次为乌龙茶和红茶。可见，每～种氨基酸的含量，因茶的种类而各不相同。
茶叶中维生素的功效与含量
茶维生素是维护身体健康所必需的一类有机化合物，这些物质在体内既不构成组织，也不提供热能，虽然所需的数量很少，但作用很大，是调节体内物质代谢必不可少的。
维生素在人体内不能自行合成，必须由食物供应。维生素可分为两大类，即脂溶性维生素和水溶性维生素，前者包括维生素A、维生素D、维生素E和维生素K，维生素C、B族维生素等。人体需要的维生素共有10余种，茶叶中含有丰富的维生素。茶叶中的水溶性维生素能够全部溶解在热水中，浸出率几乎达100%，而脂溶性维生素较难溶于水，所以人们通过饮茶获得的脂溶性维生素不多。
据有关资料称茶叶中含有大量的维生素C，其含量因茶叶种类不同有很大的差异，通常每100克茶含有100-500毫克，其中绿茶比红茶高;优质绿茶多在200毫克以上，高档绿茶含量更高。
实验研究，临床验证和流行病学调查都证实维生素C具有非常重要的生理功能，能防治坏血病，提高身体免疫力。
B族维生素参与体内多种生理生化代谢过程，维持神经、心脏及消化系统的正常功能。如缺乏维生素B.可发生脚气病、多发性神经炎、胃肠机能障碍，缺乏维生素B2引起角膜炎、结膜炎、口角炎、舌炎、口腔溃疡和阴囊皮炎等。茶叶中B族维生素的量是比较丰富的，如每天饮茶25克，可满足人体25%的需要量，通常绿茶中的B族维生素的含量高于其他类型的茶叶，细嫩的绿茶中含量更高。